Spermatogeneza obejmuje wszystkie zjawiska zachodzące w procesie przekształ cania się spermatogonii w plemniki. Różnicowanie pierwotnych komórek płciowych rozpoczyna się u mężczyzn w okresie pokwitania, natomiast u kobiet już w okresie płod owym podczas 3. miesiąca rozwoju. W okresie okołoporodowym komórki płciowe mężczyzny można rozpoznać w sznurach płciowych (niedojrzałe kanaliki nasienne kręte) jądra jako duże, słabo zabarwione komórki otoczone przez młode komórki podporowe (ryc. 1-11 A).
Ryc. 1-11. A, Przekrój poprzeczny przez niedojrzały sznur płciowy (niedojrzały kanalik nasienny kręty) noworodka płci męskiej z pierwotnymi komórkami płciowymi i komórkami podporowymi. B i C, Dwa fragmenty kanalika krętego w przekroju poprzecznym. Zwracają uwagę różne stadia spermatogenezy.
Primordial germ cell – pierwotna komórka płciowa; Supporting cell – młoda komórka podporowa; Basement membranę – błona podstawna; Spermatocyte division – podział spermatocytu; Spermatogonia – sper-matogonie; Maturing spermatids – dojrzewające spermatydy; Secondary spermatocyte – spermatocyt II rzędu; Spermatozoon – plemnik; Primary spermatocyte in prophase – spermatocyt l rzędu w profazie; Spermatogonial division – podział spermatogonii
Ryc. 1-13. Schematycznie przedstawiona spermatogeneza człowieka.
Type B spermatogonium – spermatogonia typu B; Mitotic division – podział mitotyczny; Resting primary spermatocyte – spoczynkowy spermatocyt l rzędu; 1st meiotic division – pierwszy podział mejotyczny; Secondary spermatocyte – spermatocyt II rzędu; 2nd meiotic division – drugi podział mejotyczny; Spermatid – spermatyda
Ryc. 1-14. Schematyczne rysunki pokazujące ważne etapy w procesie przekształcania się ludzkiej spermatydy w plemnik. (Z pracy Clermonta i Leblonda).
Centriole – centriola; Golgi material – materiał z aparatu Golgiego; Acrosomic granule – ziarenko akrosomowe; Acrosome – akrosom; Ring structure – pierścień; Nucleus covered by acrosome – jądro pokryte przez akrosom; Tail piece – witka; Middle piece – wstawka
Te ostatnie prawdopodobnie pochodzą z na błonka powierzchniowego gruczołu, podobnie jak komórki pęcherzykowe jajnika, i dają początek komórkom podporowym (komórkom Sertolego).
Na krótko przed pokwitaniem w sznurach płciowych pojawia się światło i przekształcają się one w kanaliki nasienne kręte. W tym samym prawie okresie z pierwotnych komórek płciowych powstają spermatogonie, wśród których rozróżnia się dwa typy: spermatogonie typu A dzielące się mitotycznie i stanowiące stałe źródło komórek macierzystych i spermatogonie typu B, z których powstają spermatocyty I rzędu. W normalnym procesie różnicowania niektóre spermatogonie typu A opusz czają populację komórek macierzystych i dają początek kolejnym generacjom spermatogonii, przy czym każda następna generacja jest bardziej zróżnicowana niż poprzednia (ryc. 1-11 B, C i 1-12). Po zakończeniu ostatniego podziału komórek typu A dochodzi do utworzenia spermatogonii typu B; a gdy one z kolei podzielą się mitotycznie powstaną spermatocyty I rzędu (ryc. 1-12). Spermatocyty I rzędu rozpo czynają następnie wydłużoną profazę (22 dni), po której następuje szybkie zakoń czenie pierwszego podziału mejotycznegoj utworzenie spermatocytów II rzędu. Komórki te zaczynają natychmiast po drugim podziale mejotycznym przekształcać się w spermatydy (ryc. 1-12, 1-13 i 1-14), zawierające 23 chromosomy, czyli liczbę haploidalną. W czasie gdy zachodzą te procesy, od momentu gdy spermatogonie typu A opuszczą populację komórek macierzystych, do czasu gdy uformują się sper matydy, cytokineza nie ulega zakończeniu, tak że następujące po sobie generacje komórek są połączone mostkami cytoplazmatycznymi. W ten sposób komórki pochodzące z pojedynczej spermatogonii typu A tworzą grupę komórek płciowych pozostających z sobą w kontakcie w trakcie różnicowania (ryc. 1-12).
Ryc. 1-16. Rysunki nieprawidłowych komórek płciowych kobiety i mężczyzny. A, Pierwotny pęcherzyk jajnikowy z dwoma owocytami. B, Owocyt z trzema jądrami; C, Różne formy nieprawidłowych plemników.
Primordial follicle with two oocytes – pierwotny pęcherzyk jajnikowy z dwoma owocytami; Trinucleated oocyte – owocyt z trzema jądrami
Ponadto spermatogonie i spermatydy pozostają w czasie rozwoju pogrążone w głębokich zachyłkach komórek podporowych (Sertolego) (ryc. 1-15). W ten sposób komórki Sertolego podtrzymują i chronią komórki płciowe, uczestniczą w ich odżywianiu i mają udział w uwalnianiu dojrzałych plemników.
SPERMIOGENEZA
Seria zmian prowadzących do przekształcenia spermatyd w plemniki nazywa się spermiogenezą. Zmiany te obejmują (a) utworzenie akrosomu, zajmującego ponad połowę powierzchni jądra plemnika i zawierającego enzymy pomocne przy wnikaniu do komórki jajowej i przechodzeniu przez otaczające ją struktury w czasie zapłodnienia (ryc. 1-14B, C); (b) kondensację jądra; (c) utworzenie szyjki, wstawki i witki (ryc. 1-14C) oraz (d) pozbycie się większości cytoplazmy (ryc. 1-14D). Okres potrzebny do rozwinięcia się spermatogonii w dojrzały plemnik wynosi u ludzi w przybliżeniu 64 dni (16).
Po całkowitym uformowaniu plemniki przechodzą do światła kanalików nasiennych krętych. Stamtąd są transportowane w kierunku najądrza za pomocą elementów kurczliwych kanalików nasiennych krętych. Plemniki wykazujące początkowo nieznaczną ruchliwość stają się w pełni ruchliwe w najądrzu.
NIEPRAWIDŁOWE GAMETY
U ludzi, podobnie jak u większości ssaków, pojedynczy pęcherzyk jajnikowy zawiera niekiedy dwa lub trzy wyraźnie oddzielone od siebie owocyty I rzędu (ryc. 1-16A). Z owocytów tych mogą niekiedy wykształcić się bliźnięta lub trojaczki, przeważnie jednak ulegają one zwyrodnieniu jeszcze przed osiągnięciem dojrzałości. W rzadkich przypadkach owocyt I rzędu ma dwa lub trzy jądra (ryc. 1-16B). Owocyty takie obumierają, zanim staną się zdolne do zapłodnienia. W przeciwieństwie do nietypowych owocytów nieprawidłowe plemniki spotyka się często. Nieprawidłowość może dotyczyć zarówno główki, jak i witki plemników. Plemniki mogą także mieć zbyt małe lub zbyt duże rozmiary albo zlewać się z sobą. Istnieją dane wskazujące, że 10% plemników może być nieprawidłowych bez zmniejszenia płodności. Jeśli jednak 25% lub więcej plemników odbiega od normy, to zdolność do zapłodnienia obniża się.
Piśmiennictwo
l. Martin RH, Balkan W, Burns K, Rademaker AW, Lin CC, Rudd NL: The chromosome constitution of 1000 human spermatozoa. Hum Genet 63:305, 1983.
- Witschj E: Migration of the germ cells of the human embryos from the yolk sac to the primitive gonadal folds. Contrib Embryol 32:67, 1948.
- Blandau RH, White BJ, Rumery RE: Observations on the movements of the living primordial germ cells in the mouse. Fertil Steril 14:482, 1963.
- Pinkerton HM, McKay DG, Adams EC, Hertig AT: Development of the human ovary – a sttudy using histochemical techniques. Obstet Gynecol 18:152, 1961.
- Franchi IL Mandl AM, Zuckerman S: The development of the ovary and the process of oogenesis. In Zuckermann S, Mandl AM, Eckstein P (eds): The Ovary. New York, Academic Press, 1962.
- Ohno S, Makino S, Kaplan WD, Kinosita R: Female germ cells in man. Exp Cell Res 24:106,1961
- Ohno S, Klinger HP, Atkin NB: Human oogenesis. Cytogenetics 1:42, 1962.
- Ohno S, Smith JB: Role of fetal follicular cells in meiosis of mammalian oocytes. Cytogenetics 3:324, 1964.
- Manotaya T, Potter EL: Oocytes in prophase of meiosis from squash preparations of human fetal ovaries. Fertil Steril 14:378, 1963.
- Page EW, Villee CA, Villee DB: Human Reproduction. Essentials of Reproductive and Perinatal Medicine, WB Saunders, 1981.
- Weakley BS: Electron microscopy of the oocyte and granulosa cells in the developing ovarian follicles of the golden hamster (Mesocricetus auratus). J Anat 100:503, 1966.
- Zamboni L: Fine morphology of the follicle wall and follicle cell-oocyte association. Biol Reprod 10:125, 1974
- . Anderson E, Albertini DF: Gap junctions between the oocyte and companion follicle cells in the mammalian ovary. J Cell Biol 71:680, 1976.
- Albrecht ED, Koos RD, Wehrenberg WB: Ovarian 5 -3-betha-hydroxysteroid dehyd- rogenase and cholesterol in the aged mouse during pregnancy. Biol Reprod 13:158,1975.
- Hafez ESE: Human Ovulation. Mechanisms, Prediction, Detection and Induction. Amsterdam, North Holland Publishing Co., 1979. 16. Heller CG, Clermont Y: Kinetics of the germinal epithelium in man. Recent Prog Horm Res 20:545, 1964.
